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Notch 3 CRISPR Activation Plasmid (m) | sc-421933-ACT | 20 µg | $397.00 |
Das murine Notch3-Gen kodiert den Notch-3-Rezeptor, einen Single-Pass-Transmembran-Transkriptionsregulator, der durch ligandabhängige proteolytische Spaltung und anschließende Translokation der Notch-intrazellulären Domäne in den Zellkern aktiviert wird. In vaskulären glatten Muskelzellen und Perizyten trägt die NOTCH3-Signalgebung über kanonische, RBPJ-vermittelte Transkription sowie durch Crosstalk mit Signalwegen wie TGF-β, PDGFR und MAPK zur Steuerung von Zellschicksalsentscheidungen, Reifung und Gefäßstabilität bei. Eine veränderte Notch3-Aktivität wird mit fehlregulierten Differenzierungsprogrammen und Umbauprozessen in der kardiovaskulären und neurovaskulären Biologie in Verbindung gebracht und wird zudem häufig im Kontext von Linienplastizität und Signalnetzwerken von Tumorzellen untersucht. Daher ist Notch3 ein häufiges Ziel zur Untersuchung von Entwicklungssignalen, Zell‑Zell‑Kommunikation und Transkriptionszustandsübergängen in Mausmodellsystemen.
Notch 3 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (m) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen Notch3-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
Notch 3 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (m) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des Notch3-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der Notch3-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen Notch 3-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native Notch3-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von Notch 3-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des Notch 3-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem Notch3-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.