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MerTK Double Nickase Plasmid (m) | sc-421631-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
MerTK Double Nickase Plasmid (m2) | sc-421631-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Das Mausgen *Mertk* kodiert MerTK, eine Rezeptor-Tyrosinkinase der TAM-Familie, die über Brückenliganden wie GAS6 und PROS1 Phosphatidylserin auf apoptotischen Zellen erkennt und dadurch die Efferzytose sowie die Immunhomöostase fördert. Die MerTK-Signalgebung aktiviert PI3K–AKT-, MAPK/ERK- und STAT-Signalwege, um in Makrophagen, Mikroglia, dendritischen Zellen und im retinalen Pigmentepithel Zytoskelett-Remodellierung, Phagosomenreifung und antiinflammatorische Transkriptionsprogramme zu koordinieren. Eine gestörte *Mertk*-Funktion wurde mit einer mangelhaften Beseitigung absterbender Zellen, veränderter Regulation der angeborenen Immunantwort und Gewebedegeneration in Verbindung gebracht, was sie für Studien zu Neuroinflammation, retinaler Homöostase und autoimmunähnlichen Phänotypen in Mausmodellen relevant macht. Als Knotenpunkt, der phagozytäre Aufnahme mit der Feinabstimmung von Zytokinen verknüpft, wird MerTK in der Forschung zu myeloider Signalgebung und Clearance-Mechanismen häufig untersucht.
MerTK Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Mertk-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Mertk abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Mertk-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Mertk-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.