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Lipin-1 Double Nickase Plasmid (m) | sc-420378-NIC | 20 µg | $410.00 |
Das Mausgen **Lpin1** kodiert **Lipin-1**, eine Mg²⁺-abhängige Phosphatidsäure-Phosphatase (PAP1), die Phosphatidsäure zu Diacylglycerol umsetzt und damit die Glycerolipid-Biosynthese mit dem Umbau von Membranlipiden sowie der Lipid-Signalgebung verknüpft. Über seine enzymatische Funktion hinaus kann Lipin-1 Transkriptionsprogramme beeinflussen, die die Lipidoxidation und den mitochondrialen Stoffwechsel steuern, und so den Nährstoffstatus mit der Expression metabolischer Gene koppeln. Die Aktivität von **Lpin1** wirkt sich auf die Adipozytendifferenzierung, den hepatischen Lipidstoffwechsel und die Energiehomöostase der Skelettmuskulatur aus; eine Dysregulation ist in experimentellen Modellen mit lipodystrophieähnlichen Phänotypen, Fettleber, Insulinresistenz und entzündlichem metabolischem Stress assoziiert. Diese Funktionen machen Lipin-1 zu einem zentralen Knotenpunkt für die Untersuchung lipidmetabolischer Signalwege, des ER–Mitochondrien-Crosstalks und von Mechanismen metabolischer Erkrankungen.
Lipin-1 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Lpin1-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Lpin1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Lpin1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Lpin1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.