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HSPA5/BiP/GRP78 Double Nickase Plasmid (m) | sc-420699-NIC | 20 µg | $410.00 |
Hspa5 kodiert das im ER lokalisierte Chaperon HSPA5/BiP/GRP78, einen zentralen Regulator der Qualitätskontrolle der Proteinfaltung und der Proteostase in Maus-Zellen. HSPA5 bindet neu synthetisierte oder fehlgefaltete Polypeptide und koordiniert die Unfolded-Protein-Response (UPR) über Interaktionen, die ER-Stresssensoren wie PERK, IRE1 und ATF6 modulieren. Indem es die ER-assoziierte Degradation (ERAD), die Ca²⁺-Homöostase und den Durchsatz des sekretorischen Weges beeinflusst, trägt es dazu bei zu bestimmen, ob Zellen sich an Stress anpassen oder in die Apoptose gehen. Eine dysregulierte HSPA5-Aktivität wird häufig im Kontext von metabolischem Stress, Neurodegeneration und onkogenem Signaling untersucht, wo chronischer ER-Stress und veränderte Proteostase zu krankheitsrelevanten Phänotypen beitragen.
HSPA5/BiP/GRP78 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Hspa5-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Hspa5 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Hspa5-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Hspa5-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.