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HSF1 Double Nickase Plasmid (m) | sc-420971-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
HSF1 Double Nickase Plasmid (m2) | sc-420971-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Hitzeschockfaktor 1 (HSF1), kodiert durch das Mausgen *Hsf1*, ist ein zentraler transkriptioneller Regulator der Hitzeschockantwort, der die Proteostase bei thermischem und proteotoxischem Stress aufrechterhält. Nach Aktivierung trimerisiert HSF1 und bindet an Hitzeschock-Response-Elemente, um molekulare Chaperone wie HSP70 und HSP90 zu induzieren und so Proteinfaltung, Qualitätskontrolle und die Erholung von zellulären Schäden zu koordinieren. HSF1 ist mit Signalwegen verknüpft, die Protein-Homöostase, Autophagie, Apoptose und metabolische Anpassung steuern, und beeinflusst damit das Überleben von Zellen unter Stress. Eine fehlregulierte HSF1-Aktivität wurde mit Prozessen in Verbindung gebracht, die für Neurodegeneration, Alterung, Entzündung und krebsassoziierte Stressprogramme relevant sind, was HSF1 zu einem wichtigen Knotenpunkt für mechanistische Studien in Mausmodellen macht.
HSF1 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Hsf1-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Hsf1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Hsf1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Hsf1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.