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HLA-DQB1 Double Nickase Plasmid (h) | sc-403051-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
HLA-DQB1 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-403051-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
HLA-DQB1 kodiert die β‑Kette des heterodimeren MHC‑Klasse‑II‑Rezeptors HLA‑DQ, der vor allem auf professionellen antigenpräsentierenden Zellen exprimiert wird. Dort bindet er extrazelluläre Peptidantigene und präsentiert sie CD4+‑T‑Zellen. Durch das Beladen mit Peptiden im endosomalen/lysosomalen Kompartiment und die anschließende Präsentation an der Zelloberfläche trägt HLA-DQB1 zur Aktivierung der adaptiven Immunantwort, zur peripheren Toleranz sowie zur zytokingesteuerten Immun-Signalübertragung bei. Allelische Variation und veränderte Expression von HLA-DQB1 beeinflussen das Antigenrepertoire und die T‑Zell‑Reaktivität und verbinden diesen Lokus mit der Anfälligkeit für immunvermittelte Erkrankungen sowie mit der immunologischen Erkennung im Transplantationskontext. Als Teil der HLA‑Klasse‑II‑Region wird HLA-DQB1 in der Immunogenetik, der Dynamik der Antigenpräsentation und den Mechanismen von Autoimmunität und Entzündung umfassend untersucht.
HLA-DQB1 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des HLA-DQB1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von HLA-DQB1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die HLA-DQB1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit HLA-DQB1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.