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FKBP12.6 CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-401445-ACT | 20 µg | $397.00 | |||
FKBP12.6 CRISPR Activation Plasmid (h2) | sc-401445-ACT-2 | 20 µg | $397.00 |
FKBP1B kodiert FKBP12.6, eine Immunophilin-Peptidyl-Prolyl-cis-trans-Isomerase, die an intrazelluläre Calciumfreisetzungskanäle bindet und die Erregungs-Kontraktions-Kopplung moduliert. FKBP12.6 interagiert mit Ryanodinrezeptoren, insbesondere RyR2, stabilisiert das Öffnungs- und Schließverhalten der Kanäle und trägt zur Calciumhomöostase in Kardiomyozyten und anderen erregbaren Zellen bei. Über diese Interaktionen beeinflusst FKBP12.6 Ca2+-abhängige Signalkaskaden, die die Mitochondrienfunktion, Reaktionen auf oxidativen Stress sowie Transkriptionsprogramme steuern, die mit zellulärem Remodeling verknüpft sind. Eine dysregulierte FKBP1B-Expression oder eine veränderte Kopplung zwischen FKBP12.6 und RyR wurde in Forschungskontexten zu kardiovaskulären und neuromuskulären Erkrankungen mit einer gestörten Calciumhandhabung in Verbindung gebracht.
FKBP12.6 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen FKBP1B-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
FKBP12.6 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des FKBP1B-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der FKBP1B-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen FKBP12.6-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native FKBP1B-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von FKBP12.6-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des FKBP12.6-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem FKBP1B-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.