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ephrin-A5 Double Nickase Plasmid (m) | sc-420123-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
ephrin-A5 Double Nickase Plasmid (m2) | sc-420123-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Efna5 kodiert Ephrin-A5, einen GPI-verankerten Liganden für EphA-Rezeptor-Tyrosinkinasen, der kontaktabhängige Signale vermittelt, um während der Entwicklung des Nervensystems die Zellpositionierung, Grenzbildung und Axonführung zu koordinieren. Ephrin-A5–EphA-Interaktionen regulieren über GTPasen der Rho-Familie den Umbau des Zytoskeletts und die Adhäsionsdynamik und beeinflussen dadurch Neuritenauswuchs, synaptisches Targeting und Gewebemusterbildung. In Mausmodellen wurde veränderte Ephrin-A5-Signalgebung mit Defekten in der corticothalamischen und retinalen Axonverschaltung, der Hippocampus-Verschaltung und weiteren neuroentwicklungsbezogenen Prozessen in Verbindung gebracht. Eine Fehlregulation von Eph/Ephrin-Signalwegen wird zudem im Kontext abweichender Zellmigration und Invasion untersucht, wodurch Efna5 ein relevantes Ziel für mechanistische Forschung in der Entwicklungsneurobiologie und krankheitsassoziierter Signalgebung ist.
ephrin-A5 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Efna5-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Efna5 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Efna5-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Efna5-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.