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DDEF1 CRISPR/Cas9 KO Plasmid (m) | sc-419968 | 20 µg | $397.00 | |||
DDEF1 HDR Plasmid (m) | sc-419968-HDR | 20 µg | $445.00 |
Asap1 kodiert DDEF1 (auch bekannt als ASAP1), ein Arf‑GTPase‑aktivierendes Protein, das Signale von Rezeptor‑Tyrosinkinasen und Fokalkomplexen/Fokaladhäsionen integriert, um Membrantransport und den Umbau des Aktinzytoskeletts zu regulieren. Über Interaktionen mit Phosphoinositiden und Gerüst-/Adapterpartnern an Adhäsionsstellen beeinflusst DDEF1 die Zellausbreitung, Migration und invadopodienähnliche Strukturen, indem es Arf‑abhängige Endozytose und Recycling koordiniert. Diese Funktionen verorten Asap1 in Signalwegen, die Zellpolarität und den Turnover von Adhäsionen steuern – Prozesse, die häufig in Modellen der Gewebeumgestaltung und onkogenen Transformation untersucht werden. Eine fehlregulierte ASAP1/DDEF1‑Aktivität wurde in der Krebsbiologie mit verändertem invasivem Verhalten und metastaseassoziierten Phänotypen in Verbindung gebracht, was es zu einem nützlichen Ziel für mechanistische Studien in Mausmodellen macht.
DDEF1 CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (m) ist ein Pool von Plasmiden, die für die gezielte Disruption des Asap1-Gens in mouse-Zelllinien entwickelt wurden. Jedes Plasmid im Pool koexprimiert eine einzigartige sgRNA, die auf eine bestimmte Stelle innerhalb des Asap1-Lokus abzielt, zusammen mit der Streptococcus pyogenes Cas9-Nuklease, und kodiert für GFP, um die fluoreszente Identifizierung und Anreicherung erfolgreich transfizierter Zellen zu ermöglichen. Diese Multi-Guide-Strategie erhöht die Wahrscheinlichkeit, Frameshifts oder Deletionen zu induzieren, die zu einem funktionellen Knockout führen, und bietet damit eine robustere Alternative zu Single-Guide-Ansätzen. An mehreren Stellen induzierte DSBs werden durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ) oder, bei Verwendung mit der enthaltenen HDR-Donor-Matrize, durch homologe Reparatur (HDR) an einer definierten Zielstelle innerhalb des Lokus repariert.
Bei Verwendung in Verbindung mit dem RFP-exprimierenden HDR-Donor können GFP- und RFP-Fluoreszenz gemeinsam genutzt werden, um transfizierte von editierten Zellpopulationen zu unterscheiden, was die auf Durchflusszytometrie basierenden Sortier- und Klonauswahl-Workflows optimiert.
Für Anwendungen, die bestätigte, selektierbare Knockout-Klone erfordern, enthält das DDEF1 HDR-Plasmid (m) ein HDR-Donorkonstrukt mit einer Puromycin-Resistenzkassette (PuroR) und einem Reporter für rotes fluoreszierendes Protein (RFP), flankiert von Homologiearmen, die für eine definierte Asap1 Zielstelle spezifisch sind.
Bei Co-Transfektion mit dem DDEF1 CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (m):
Das HDR-Donorkonstrukt verfügt über loxP-Stellen, die die PuroR-RFP-Selektionskassette flankieren, um eine saubere Markerentfernung nach der Klonbestätigung zu ermöglichen. Die transiente Expression der Cre-Rekombinase über das enthaltene Cre-Vektor: sc-418923 schneidet die Kassette heraus, wobei eine minimale Rest-loxP-Stelle innerhalb des Asap1-Lokus verbleibt und potenzielle Störeffekte auf nachgeschaltete Assays eliminiert werden.
Dieser zweistufige Ansatz:
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.