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Clathrin Light Chain B/CLTB CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-404228-ACT | 20 µg | $397.00 |
CLTB kodiert die Clathrin-Leichtkette B, eine zentrale Komponente clathrinbeschichteter Vesikel, die die rezeptorvermittelte Endozytose und den intrazellulären Transport zwischen der Plasmamembran, Endosomen und dem trans-Golgi-Netzwerk reguliert. Durch die Modulation der Dynamik des Clathrin-Gitters zusammen mit der Clathrin-Schwerkette und Adapterkomplexen wie AP2 trägt CLTB zur Cargo-Auswahl, zur Vesikelabschnürung und zum Recycling synaptischer Vesikel in spezialisierten Zelltypen bei. Diese Transportachse beeinflusst die Dauer von Signalübertragung und den Rezeptorumsatz und verknüpft CLTB-assoziierte Prozesse mit zellulärer Homöostase, Proliferation und Stressantworten. Eine fehlregulierte endozytotische Trafficking-Maschinerie und clathrinabhängiger Transport werden häufig im Kontext der Neurobiologie, viraler Eintrittswege und krebsassoziierter Veränderungen der Rezeptor-Signalgebung untersucht.
Clathrin Light Chain B/CLTB Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen CLTB-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
Clathrin Light Chain B/CLTB Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des CLTB-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der CLTB-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen Clathrin Light Chain B/CLTB-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native CLTB-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von Clathrin Light Chain B/CLTB-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des Clathrin Light Chain B/CLTB-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem CLTB-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.