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CD72 CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-404054-ACT | 20 µg | $397.00 |
CD72 ist ein B‑Zell‑spezifisches Typ‑II‑Transmembran‑Glykoprotein, das als inhibierender Korezeptor wirkt, um die Signalierungsschwellen des B‑Zell‑Rezeptors (BCR) feinzujustieren und die Immunhomöostase aufrechtzuerhalten. Über sein zytoplasmatisches ITIM‑Motiv rekrutiert CD72 Phosphatasen wie SHP‑1, um proximale Kinasekaskaden abzuschwächen und nachgeschaltete Signalwege wie MAPK und NF‑κB zu modulieren; dadurch werden Aktivierung, Proliferation und Toleranz von B‑Zellen beeinflusst. CD72 ist außerdem an regulatorischen Interaktionen mit Liganden wie SEMA4D/CD100 beteiligt und integriert Signale, die antigengetriebene Antworten und die Dynamik in Keimzentren beeinflussen. Eine dysregulierte CD72‑Expression oder ‑Signalgebung wurde mit veränderter B‑Zell‑Funktion in Verbindung gebracht und ist relevant für Untersuchungen zu Autoimmunität, B‑Zell‑Malignomen sowie zur Regulation von Immuncheckpoints im Tumormikromilieu.
CD72 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen CD72-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
CD72 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des CD72-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der CD72-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen CD72-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native CD72-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von CD72-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des CD72-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem CD72-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.