
Bestellinformation
| Produkt | Katalog # | EINHEIT | Preis | ANZAHL | Favoriten | |
ATR Double Nickase Plasmid (h) | sc-400335-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
ATR Double Nickase Plasmid (h2) | sc-400335-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
ATR kodiert eine Serin/Threonin-Proteinkinase, die als zentraler Regulator der Replikationsstressantwort und der DNA-Schadenssignalgebung fungiert. ATR wird vor allem durch RPA-beschichtete einzelsträngige DNA an zum Stillstand gekommenen Replikationsgabeln aktiviert und phosphoryliert Schlüsselsubstrate wie CHK1, um die S‑Phasen-Checkpoint-Kontrolle, die Stabilisierung der Replikationsgabel und die Unterdrückung des Origin-Firings zu koordinieren. Durch Crosstalk mit dem ATM-Signalweg und der homologen Rekombinationsmaschinerie bewahrt ATR die Genomintegrität während der Replikation und als Antwort auf genotoxischen Stress. Eine fehlregulierte ATR-Signalgebung und eine erhöhte Toleranz gegenüber Replikationsstress werden häufig mit Phänotypen genomischer Instabilität in Verbindung gebracht, wie sie in der Krebsbiologie und bei vererbten DNA-Reparaturerkrankungen untersucht werden.
ATR Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des ATR-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von ATR abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die ATR-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit ATR-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.