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AKR1B10 CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-403649-ACT | 20 µg | $397.00 |
AKR1B10 kodiert eine humane, NADPH‑abhängige Aldo‑Keto‑Reduktase, die reaktive Carbonylverbindungen sowie aus der Lipidperoxidation stammende Aldehyde reduziert und damit zur zellulären Redoxhomöostase und Entgiftung beiträgt. Durch die Modulation des Retinoid- und Lipidstoffwechsels und die Abpufferung von oxidativem Stress beeinflusst AKR1B10 Programme der Proliferation, Differenzierung und entzündlichen Signalübertragung. Eine dysregulierte AKR1B10-Expression wurde in mehreren Tumorkontexten sowie in metabolischen und oxidativ stressassoziierten Zuständen beschrieben, in denen eine veränderte Carbonylverarbeitung die zelluläre Fitness umgestalten kann. Daher wird AKR1B10 häufig als Knotenpunkt untersucht, der Xenobiotikaantwort, Lipid-Remodeling und Stressadaptationswege miteinander verknüpft.
AKR1B10 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen AKR1B10-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
AKR1B10 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des AKR1B10-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der AKR1B10-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen AKR1B10-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native AKR1B10-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von AKR1B10-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des AKR1B10-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem AKR1B10-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.