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AKAP 12 Double Nickase Plasmid (h) | sc-406008-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
AKAP 12 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-406008-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
AKAP12 kodiert das A‑Kinase-Ankerprotein 12 (AKAP12), ein Gerüstprotein, das PKA, PKC und Phosphatasen räumlich organisiert, um kompartimentierte Signalübertragung an der Plasmamembran und am Zytoskelett zu koordinieren. Durch die Integration von Signalen aus GPCR‑ und wachstumsfaktorgetriebenen Signalwegen beeinflusst AKAP12 Zellform, Motilität, Adhäsionsdynamik und den Umbau des Zytoskeletts, indem es aktinassoziierte Prozesse reguliert. Eine veränderte AKAP12-Expression oder ein veränderter Signalgebungskontext wurde mit fehlregulierten Migrations‑ und Proliferationsprogrammen in Verbindung gebracht, die für die Krebsbiologie sowie vaskuläre und inflammatorische Antworten relevant sind. Diese Eigenschaften machen AKAP12 zu einem nützlichen Ziel, um zu untersuchen, wie verankerte Kinase-Signale Barrierefunktion, Stressantworten und mikroumgebungsabhängige Phänotypen steuern.
AKAP 12 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des AKAP12-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von AKAP12 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die AKAP12-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit AKAP12-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.