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ACADVL (VLCAD) Double Nickase Plasmid (h) | sc-403111-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
ACADVL (VLCAD) Double Nickase Plasmid (h2) | sc-403111-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
ACADVL kodiert die sehr langkettige Acyl‑CoA‑Dehydrogenase (VLCAD), ein mit der inneren Mitochondrienmembran assoziiertes Flavoprotein, das den ersten Dehydrierungsschritt der β‑Oxidation langkettiger Fettsäure‑Acyl‑CoAs katalysiert. Durch die Initiierung der mitochondrialen Fettsäureoxidation unterstützt VLCAD die Energiehomöostase während des Fastens und in Zuständen hohen Energiebedarfs und trägt zur Bildung von Acetyl‑CoA bei, das nachgeschaltet in den Citratzyklus (TCA‑Zyklus) und die oxidative Phosphorylierung eingespeist wird. Die Funktion von ACADVL ist eng mit dem Lipidabbau, dem mitochondrialen Redoxgleichgewicht und zellulären Antworten auf die Nährstoffverfügbarkeit verknüpft. Störungen von ACADVL sind mit erblichen Erkrankungen der Oxidation langkettiger Fettsäuren assoziiert, wodurch der Locus für die Untersuchung von Phänotypen unter metabolischem Stress und Mechanismen der mitochondrialen Dysfunktion in humanen Zellen relevant ist.
ACADVL Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des ACADVL-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von ACADVL abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die ACADVL-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit ACADVL-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.