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β-FR Double Nickase Plasmid (h) | sc-403346-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
β-FR Double Nickase Plasmid (h2) | sc-403346-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
FOLR2 kodiert den Folatrezeptor Beta (β‑FR), einen über einen Glycosylphosphatidylinositol-(GPI)-Anker an die Zelloberfläche gebundenen Rezeptor, der reduzierte Folate bindet und deren rezeptorabhängige Aufnahme zur Unterstützung des Ein-Kohlenstoff-Stoffwechsels vermittelt. Durch die Modulation der intrazellulären Folatverfügbarkeit beeinflusst β‑FR die Nukleotidbiosynthese sowie Methylierungsreaktionen, die für Proliferations- und Differenzierungsprogramme essenziell sind. FOLR2 ist in Populationen der myeloischen Linie angereichert, insbesondere in Subsets von Gewebemakrophagen, wodurch seine Expression mit Aktivierungszuständen von Immunzellen und dem Umbau des Mikromilieus verknüpft ist. Eine veränderte FOLR2-Expression wurde mit Entzündungsbiologie und makrophagenassoziierten Merkmalen in verschiedenen Krankheitskontexten in Verbindung gebracht, was FOLR2 zu einem nützlichen Marker und funktionellen Knotenpunkt für mechanistische Studien macht.
β-FR Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des FOLR2-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von FOLR2 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die FOLR2-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit FOLR2-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.