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β3Gn-T3 Double Nickase Plasmid (h) | sc-411457-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
β3Gn-T3 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-411457-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
B3GNT3 kodiert die humane Glykosyltransferase β3Gn‑T3, ein im Golgi-Apparat lokalisiertes Enzym, das die β1,3-verknüpfte Übertragung von N‑Acetylglucosamin auf Glykan-Akzeptoren katalysiert, um Poly‑N‑acetyllactosamin-Strukturen auf Glykoproteinen und Glykolipiden zu verlängern. Durch die Regulation der Ausgestaltung von N‑ und O‑Glykanen trägt β3Gn‑T3 zur Reifung von Glykoproteinen, zur Lektinbindung sowie zu Zell‑Zell- bzw. Zell‑Matrix-Interaktionen bei, die Adhäsion und Signalübertragung beeinflussen. Eine veränderte Expression oder Aktivität von B3GNT3 wurde mit Änderungen in Glykosylierungsmustern in mehreren pathologischen Kontexten in Verbindung gebracht, darunter tumorassoziiertes Glykan-Remodeling und immunbezogene Prozesse. Daher wird B3GNT3 häufig in glykobiologischen Arbeitsabläufen untersucht, die Golgi-Glykosylierungsnetzwerke, Rezeptor-Trafficking und Interaktionen mit der extrazellulären Matrix analysieren.
β3Gn-T3 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des B3GNT3-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von B3GNT3 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die B3GNT3-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit B3GNT3-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.