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α-gal A Double Nickase Plasmid (h) | sc-402562-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
α-gal A Double Nickase Plasmid (h2) | sc-402562-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
GLA kodiert die humane α‑Galactosidase A (α‑gal A), eine lysosomale Exoglycosidase, die terminale α‑Galactosylreste von Glycosphingolipiden und anderen Glycokonjugaten abspaltet. Durch ihre Beteiligung am lysosomalen Katabolismus und am Sphingolipid‑Turnover unterstützt α‑gal A die Homöostase von Membranlipiden und begrenzt die Anreicherung von Glykolipid‑Substraten, die den endolysosomalen Transport und zelluläre Stressantworten stören können. Ein Verlust oder eine Verminderung der GLA‑Aktivität ist mit Morbus Fabry assoziiert, einer lysosomalen Speicherkrankheit, die durch progressive Substratablagerung sowie nachgeschaltete inflammatorische und vaskuläre Pathologie gekennzeichnet ist. Entsprechend wird GLA häufig im Kontext der Lysosomenbiologie, des Glycosphingolipid‑Stoffwechsels und der Mechanismen untersucht, die eine beeinträchtigte Degradation mit zellulärer Dysfunktion verknüpfen.
α-gal A Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des GLA-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von GLA abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die GLA-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit GLA-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.