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Ski CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-401509-ACT | 20 µg | $397.00 |
Das humane **SKI**-Gen kodiert das Protoonkogen **Ski**, einen nukleären transkriptionellen Koregulator, der Genexpressionsprogramme moduliert, die Zellproliferation, Differenzierung und Linienfestlegung steuern. Ski ist vor allem als negativer Regulator der **TGF-β/SMAD**-Signalübertragung bekannt: Es interagiert mit **SMAD2/3/4**-Komplexen und Korepressoren, um die Transkription TGF-β-responsiver Gene abzuschwächen, und beeinflusst dadurch die epithelial–mesenchymale Transition sowie den Umbau der extrazellulären Matrix. Über Crosstalk mit Signalwegen wie **MAPK** und der **retinsäureabhängigen** Transkription trägt SKI zur Entwicklungspatternbildung und zur Gewebehomöostase bei. Eine dysregulierte SKI-Aktivität wird in der Krebsbiologie mit veränderter Wachstumskontrolle und Differenzierungszuständen in Verbindung gebracht, während Keimbahnveränderungen in SKI mit Bindegewebs- und kraniofazialen Phänotypen assoziiert sind, die für die Forschung zu Entwicklungsstörungen relevant sind.
Ski Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen SKI-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
Ski Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des SKI-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der SKI-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen Ski-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native SKI-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von Ski-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des Ski-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem SKI-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.