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SHOX2 CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-402950-ACT | 20 µg | $397.00 |
SHOX2 (Short Stature Homeobox 2) kodiert einen Homeobox-Transkriptionsfaktor, der entwicklungsbezogene Genprogramme reguliert, welche die zelluläre Identität, Differenzierung und Gewebemusterbildung steuern. In menschlichen Zellen trägt SHOX2 zu transkriptionellen Netzwerken bei, die die Kardiogenese und die Festlegung der Schrittmacherzell-Linie prägen, und kann über die Modulation nachgeschalteter Zielgene epithelo-mesenchymale Eigenschaften beeinflussen. Veränderte SHOX2-Expression und Promotor-Methylierung wurden mit krebsassoziierter transkriptioneller Reprogrammierung sowie mit Entwicklungsphänotypen in Verbindung gebracht, die die kardiale Erregungsleitung und wachstumsbezogene Merkmale betreffen. Als DNA-bindender Regulator stellt SHOX2 einen gut untersuchbaren Knotenpunkt dar, um genregulatorische Schaltkreise, Effekte des Chromatinzustands und linien-/zelltypspezifische transkriptionelle Kontrolle zu analysieren.
SHOX2 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen SHOX2-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
SHOX2 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des SHOX2-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der SHOX2-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen SHOX2-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native SHOX2-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von SHOX2-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des SHOX2-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem SHOX2-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.