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| Nom du produit | Ref. Catalogue | COND. | Prix HT | QTÉ | Favoris | |
Plasmide Double Nickase (h) Septin 9 | sc-403987-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
Plasmide Double Nickase (h2) Septin 9 | sc-403987-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
SEPT9 code la septine 9, une protéine du cytosquelette liant le GTP qui s’assemble en filaments de septines hétéro-oligomériques et agit comme barrière de diffusion ainsi que comme plateforme d’ancrage pour des processus associés à l’actine et aux microtubules. La septine 9 contribue à la cytokinèse, au trafic vésiculaire, à la polarité cellulaire et au remodelage membranaire, et a été impliquée dans la régulation de la progression mitotique et de l’architecture cellulaire. Une expression altérée de SEPT9 ou une perturbation génomique est associée à des défauts de division cellulaire et d’organisation du cytosquelette, et une dysrégulation de SEPT9 a été rapportée dans divers contextes cancéreux ainsi que dans d’autres troubles impliquant une prolifération aberrante et une organisation tissulaire anormale. Ces propriétés font de la septine 9 un nœud d’étude utile pour analyser la dynamique du cytosquelette, la fidélité de la mitose et les conséquences au niveau des voies de signalisation des perturbations du réseau de septines.
Septin 9 Le plasmide double nickase (h) se compose d'une paire de plasmides appariés, conçus pour une édition hautement spécifique du locus SEPT9 dans les lignées cellulaires human. Chaque plasmide exprime une nickase Cas9 D10A et un sgRNA distinct ciblant des brins d'ADN opposés au sein de SEPT9. Lorsqu'elles sont dirigées vers des sites adjacents sur des brins d'ADN opposés, les deux nickases génèrent des cassures simple brin décalées qui, ensemble, produisent une cassure double brin décalée, nécessitant une activité coordonnée sur la cible de la part des deux guides. La cassure d'ADN qui en résulte est résolue par les voies de réparation cellulaires endogènes, le plus souvent par jonction non homologue (NHEJ), ce qui conduit à des insertions ou des délétions qui perturbent la fonction de SEPT9. En nécessitant l'engagement de deux ARNsg au locus cible, l'approche par double nick améliore la spécificité de l'édition et offre une stratégie CRISPR complémentaire pour les applications où un contrôle supplémentaire de la précision du ciblage est souhaité.
Afin de faciliter l'identification efficace des cellules éditées, un plasmide code pour la GFP permettant la visualisation par fluorescence des populations transfectées, tandis que le plasmide compagnon porte un gène de résistance à la puromycine pour la sélection antibiotique. Ensemble, ces caractéristiques favorisent l'enrichissement efficace des populations co-transfectées et simplifient la validation des clones présentant une perturbation de SEPT9.
Réservé à la recherche. N'est pas destiné à un usage diagnostique ou thérapeutique.