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RNF123 Double Nickase Plasmid (m) | sc-429979-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
RNF123 Double Nickase Plasmid (m2) | sc-429979-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Rnf123 kodiert die E3-Ubiquitin-Ligase RNF123 (auch als KPC1 bekannt), ein RING-Finger-Protein, das zur ubiquitinabhängigen Proteostase beiträgt, indem es die Ubiquitinierung von Substraten katalysiert und Proteine dem 26S-Proteasom zuführt. RNF123 wird mit der Regulation der Zellzyklusprogression in Verbindung gebracht, einschließlich des Abbaus von Zellzyklusregulatoren wie CDKN1B/p27, und kann über Ubiquitin-Proteasom-Mechanismen Checkpoints, Proliferation und zelluläre Stressantworten beeinflussen. In Mausmodellen ist eine Störung der RNF123-Funktion daher relevant, um Ubiquitin-Signalnetzwerke zu untersuchen, die mit Wachstumssteuerung, Differenzierung und Gewebehomöostase verknüpft sind. Veränderte Ubiquitinierung und proteasomvermittelte Degradation spielen in der Onkologie- und Neurobiologie-Forschung eine breite Rolle, wodurch RNF123 einen nützlichen Knotenpunkt für mechanistische Studien zu krankheitsassoziierter Proteostase und Signalungleichgewichten darstellt.
RNF123 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Rnf123-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Rnf123 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Rnf123-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Rnf123-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.