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Nrf2 CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-400017-ACT | 20 µg | $397.00 | |||
Nrf2 CRISPR Activation Plasmid (h2) | sc-400017-ACT-2 | 20 µg | $397.00 |
NFE2L2 kodiert den menschlichen Transkriptionsfaktor Nrf2, einen zentralen Regulator der zellulären Redoxhomöostase und der Detoxifikation elektrophiler Verbindungen. Unter oxidativem oder xenobiotischem Stress reichert sich Nrf2 an und bindet an Antioxidans-Response-Elemente, um Gene zu induzieren, die an der Glutathionsynthese, der NADPH-Regeneration, dem Hämstoffwechsel und der Proteostase beteiligt sind. Dabei integriert es Signalgebung über die KEAP1–CUL3-Ubiquitin-Achse sowie MAPK-/PI3K-assoziierte Signalwege. Dieses Programm prägt den Entzündungszustand und die metabolische Anpassung, und eine veränderte Nrf2-Aktivität wird mit Erkrankungen in Verbindung gebracht, die durch chronischen oxidativen Stress gekennzeichnet sind, darunter Neurodegeneration, kardiometabolische Dysfunktion und Tumorbiologie.
Nrf2 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen NFE2L2-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
Nrf2 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des NFE2L2-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der NFE2L2-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen Nrf2-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native NFE2L2-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von Nrf2-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des Nrf2-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem NFE2L2-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.