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nm23-H1 CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-401221-ACT | 20 µg | $397.00 |
NME1 kodiert nm23-H1, eine Nukleosiddiphosphat-Kinase, die das zelluläre Gleichgewicht von NTP/NDP aufrechterhält und zu Signalprozessen beiträgt, die mit Proliferation, Motilität und Stressantworten verknüpft sind. nm23-H1 wurde mit der Regulation der Zytoskelettdynamik, des Membrantransports und transkriptioneller Programme in Verbindung gebracht, die Zellmigration und Differenzierung prägen. Eine veränderte NME1-Expression wird häufig im Kontext der Tumorbiologie untersucht, wobei sie in zelltyp- und kontextabhängiger Weise mit Invasion und metastatischem Verhalten assoziiert wurde. Als breit exprimiertes menschliches Gen stellt NME1 einen nützlichen Knotenpunkt dar, um die Kopplung von Stoffwechsel und Signalgebung sowie die phänotypische Plastizität in gentechnisch erzeugten Zellmodellen zu untersuchen.
nm23-H1 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen NME1-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
nm23-H1 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des NME1-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der NME1-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen nm23-H1-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native NME1-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von nm23-H1-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des nm23-H1-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem NME1-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.