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LAIR-1 Double Nickase Plasmid (h) | sc-403542-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
LAIR-1 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-403542-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Der Leukocyte-associated immunoglobulin-like receptor 1 (LAIR1) kodiert LAIR-1, einen inhibitorischen Kollagenrezeptor, der auf vielen Immunzellen breit exprimiert wird und die Aktivierung über eine ITIM‑Signalübertragung (immunorezeptor-tyrosinbasiertes inhibitorisches Motiv) dämpft. Nach Ligandenbindung rekrutiert LAIR-1 Phosphatasen wie SHP‑1/SHP‑2, um kinasegetriebene Signalwege nachgeschaltet von Antigenrezeptoren und der Zytokinsignalgebung auszugleichen, und beeinflusst so Schwellenwerte für Proliferation, Zytokinproduktion und zytotoxische Antworten. Diese checkpoint‑ähnliche Signalkaskade wirkt sich auf die Adhäsion und Migration von Leukozyten in kollagenreichen Mikroumgebungen aus und moduliert die Wechselwirkungen zwischen angeborener und adaptiver Immunität. Eine Fehlregulation der LAIR‑1‑Aktivität wurde mit veränderter Immunhomöostase und inflammatorischen Phänotypen in Verbindung gebracht und wird häufig in Kontexten wie Autoimmunität, Infektionen und Tumor‑Immun‑Interaktionen untersucht.
LAIR-1 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des LAIR1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von LAIR1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die LAIR1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit LAIR1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.