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IL-1Rrp2 CRISPR Activation Plasmid (m) | sc-430727-ACT | 20 µg | $397.00 | |||
IL-1Rrp2 CRISPR Activation Plasmid (m2) | sc-430727-ACT-2 | 20 µg | $397.00 |
Il1rl2 kodiert den murinen Rezeptor IL‑1Rrp2, ein Mitglied der Interleukin‑1‑Rezeptorfamilie, das zur Zytokinerkennung und zur nachgeschalteten inflammatorischen Signalübertragung beiträgt. Die Aktivierung von IL‑1‑Rezeptorkomplexen ist typischerweise mit MyD88‑abhängigen Signalwegen verknüpft, die die Transkriptionsprogramme von NF‑κB und MAPK regulieren und so angeborene und adaptive Immunantworten prägen. Expression und Signalgebung über Rezeptoren der IL‑1R‑Familie beeinflussen die Aktivierung von Leukozyten, Reaktionen der Epithelbarriere sowie den Gewebeumbau während einer Entzündung. Eine Fehlregulation IL‑1‑bezogener Signalnetzwerke wird häufig in Modellen allergischer Entzündung, Autoimmunität und Infektion untersucht, in denen eine veränderte Zytokinantwort die Krankheitsphänotypen modulieren kann.
IL-1Rrp2 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (m) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen Il1rl2-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
IL-1Rrp2 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (m) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des Il1rl2-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der Il1rl2-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen IL-1Rrp2-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native Il1rl2-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von IL-1Rrp2-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des IL-1Rrp2-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem Il1rl2-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.