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IKKβ Double Nickase Plasmid (h) | sc-400247-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
IKKβ Double Nickase Plasmid (h2) | sc-400247-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
IKBKB kodiert IKKβ, den katalytischen Kern des IKK-Komplexes, der IκB-Proteine phosphoryliert und dadurch deren Ubiquitinierung und Abbau auslöst, was die nukleäre Translokation von NF-κB-Transkriptionsfaktoren ermöglicht. Über diesen kanonischen NF-κB-Signalweg integriert IKKβ Signale von Rezeptoren wie TNFR und TLR/IL-1R, um die Expression entzündungsrelevanter Gene, angeborene Immunantworten, Zellüberlebensprogramme und Stressanpassung zu koordinieren. Eine fehlregulierte IKBKB-Aktivität wurde mit der anhaltenden NF-κB-Signalgebung in entzündlichen und autoimmunen Kontexten sowie in der Tumorbiologie in Verbindung gebracht, wo sie Proliferation, Apoptoseresistenz und Zytokinnetzwerke des Mikromilieus beeinflussen kann. Als zentraler Signalknoten wird IKKβ häufig hinsichtlich seiner Rolle in der zytokingetriebenen Transkription, der Signalweg-Kreuzkommunikation mit MAPK- und Interferonantworten sowie stimulusabhängiger Veränderungen des Phosphoproteoms untersucht.
IKKβ Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des IKBKB-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von IKBKB abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die IKBKB-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit IKBKB-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.