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GBP1 CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-401778-ACT | 20 µg | $397.00 |
Humanes GBP1 (guanylate-binding protein 1) ist eine durch Interferon induzierbare große GTPase, die als antimikrobieller und inflammatorischer Effektor nachgeschaltet der JAK–STAT-Signalübertragung wirkt. GBP1 assoziiert mit intrazellulären Membranen und pathogenhaltigen Kompartimenten, um die zellautonome Immunität zu regulieren, einschließlich inflammasomassoziierter Antworten, der Einschränkung mikrobieller Replikation sowie der Modulation zytoskelettaler und vesikulärer Prozesse. Über seine Rolle in Netzwerken interferon-stimulierter Gene trägt GBP1 dazu bei, angeborene immunologische Transkriptionsprogramme zu formen, die die Antigenpräsentation und zytokinvermittelte Signalwege beeinflussen. Eine fehlregulierte GBP1-Expression wird häufig als Marker erhöhter Interferonaktivität verwendet und wurde in unterschiedlichen Krankheitskontexten mit inflammatorischer Pathobiologie sowie Zuständen des Tumor‑Immun‑Mikromilieus in Verbindung gebracht.
GBP1 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen GBP1-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
GBP1 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des GBP1-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der GBP1-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen GBP1-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native GBP1-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von GBP1-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des GBP1-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem GBP1-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.