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FBL3B CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-405317-ACT | 20 µg | $397.00 |
FBXL21 kodiert ein F-Box- und leucinreiches Repeat-Protein, das als Substraterkennungskomponente eines SCF-(SKP1–CUL1–F-box)-E3-Ubiquitin-Ligasekomplexes fungiert und spezifische Zielproteine zur Ubiquitinierung und zum proteasomalen Abbau lenkt. Durch regulierten Proteinabbau trägt FBXL21 zur Kontrolle der zellulären Taktung, von Stressantworten und der Proteostase bei, mit besonderer Relevanz für zirkadiane und transkriptionsregulatorische Netzwerke. Indem FBXL21 die Stabilität von Signalweg-Effektoren formt, kann es die Signaldynamik, die Koordination des Zellzyklus und die Anpassung an Umweltreize beeinflussen. Eine Fehlregulation von Komponenten des Ubiquitin–Proteasom-Systems, einschließlich F-Box-Proteinen, wird breit mit onkogenem Signaling, neurobiologischen Prozessen und inflammatorischen Phänotypen in Verbindung gebracht, wodurch FBXL21/FBL3B einen nützlichen Knotenpunkt für mechanistische Untersuchungen darstellt.
FBL3B Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen FBXL21-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
FBL3B Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des FBXL21-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der FBXL21-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen FBL3B-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native FBXL21-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von FBL3B-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des FBL3B-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem FBXL21-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.