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FAS Double Nickase Plasmid (h) | sc-400481-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
FAS Double Nickase Plasmid (h2) | sc-400481-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
FAS (CD95/TNFRSF6) kodiert einen Todesrezeptor, der nach Bindung des Fas-Liganden die extrinsische Apoptose einleitet, indem er die Bildung des DISC mit FADD und die Aktivierung von Caspase‑8 auslöst. Diese Signalkaskade ist über BID mit einer mitochondrialen Verstärkung gekoppelt und überschneidet sich mit NF‑κB- und MAPK‑Signalwegen, um Immunhomöostase, periphere Toleranz und die Beendigung aktivierter Lymphozyten zu koordinieren. Störungen der FAS‑Signalübertragung werden mit defektem aktivierungsinduziertem Zelltod und Lymphoproliferation in Verbindung gebracht, und eine veränderte FAS‑Regulation wurde in zahlreichen malignen und entzündlichen Kontexten beobachtet. Als Membranrezeptor mit starker Vernetzung in Signalwegen wird FAS häufig untersucht, um Apoptoseschwellen, die Selektion von Immunzellen und Mechanismen der Resistenz gegen Zelltod zu analysieren.
FAS Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des FAS-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von FAS abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die FAS-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit FAS-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.