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DR5 Double Nickase Plasmid (m) | sc-423438-NIC | 20 µg | $410.00 |
Das Mausgen **Tnfrsf10b** kodiert den Todesrezeptor 5 (DR5), ein Mitglied der TNF-Rezeptor-Superfamilie, das an TRAIL bindet und über Rezeptortrimerisierung, Rekrutierung von FADD und Aktivierung von Caspase-8 die extrinsische Apoptose einleitet. Die DR5-Signalübertragung kann über BID und Caspase-9 mit einer mitochondrialen Verstärkung verschaltet sein und zugleich NF-κB- und MAPK-Signalwege aktivieren, die die Expression entzündungsassoziierter Gene und Stressantworten beeinflussen. Die Regulation der DR5-Expression und des intrazellulären Transports bestimmt die Empfindlichkeit gegenüber Todesrezeptor-Signalen und trägt zu Zellschicksalsentscheidungen während der Immunüberwachung und der Gewebehomöostase bei. Eine veränderte Aktivität des DR5-Signalwegs wird häufig im Kontext der Tumorbiologie, der Immunregulation und der Resistenz gegenüber apoptotischen Signalen in Krankheitsmodellen untersucht.
DR5 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Tnfrsf10b-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Tnfrsf10b abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Tnfrsf10b-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Tnfrsf10b-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.