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DOM3Z Double Nickase Plasmid (h) | sc-409469-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
DOM3Z Double Nickase Plasmid (h2) | sc-409469-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
DXO (auch als DOM3Z bekannt) kodiert eine metallo-β-Lactamase-ähnliche RNA-Decapping- und Exonuklease, die zur zytoplasmatischen Qualitätskontrolle von RNA beiträgt. DOM3Z ist an Überwachungswegen beteiligt, die fehlerhaft gekappte oder unvollständig prozessierte RNAs entfernen und dadurch die mRNA-Stabilität mitgestalten sowie das Decapping mit dem 5′→3′-RNA-Abbau koppeln. Indem DXO den Umsatz defekter Transkripte und von Abbauintermediaten beeinflusst, trägt es dazu bei, die Integrität des Transkriptoms während zellulärer Stressantworten und der RNA-Prozessierung aufrechtzuerhalten. Eine Dysregulation von RNA-Abbau- und Überwachungsnetzwerken wird häufig mit veränderten Genexpressionsprogrammen in Krebs sowie in neurodegenerativen und entzündlichen Kontexten in Verbindung gebracht, was DXO zu einem relevanten Ziel für mechanistische Studien macht.
DOM3Z Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des DXO-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von DXO abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die DXO-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit DXO-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.