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caspase-2 Double Nickase Plasmid (h) | sc-401079-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
caspase-2 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-401079-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
CASP2 kodiert Caspase-2, eine initiierende Cysteinprotease, die zelluläre Stresssignale integriert und so Apoptose, Zellzyklus-Checkpoints und genomische Stabilität reguliert. Caspase-2 ist an intrinsischen Todes-Signalwegen und stressresponsiven Pfaden beteiligt, darunter p53-assoziierte Antworten auf DNA-Schäden und oxidativen Stress, und kann durch Spaltung nachgeschalteter Effektoren die Permeabilisierung der äußeren Mitochondrienmembran beeinflussen. Indem CASP2 Schadenswahrnehmung mit programmiertem Zelltod und mitotischer Kontrolle verknüpft, trägt es zur Aufrechterhaltung der Gewebehomöostase bei und wurde in Zusammenhängen wie Tumorentstehung, Neurodegeneration und inflammatorischem Stress untersucht. Eine dysregulierte CASP2-Aktivität wurde mit einer veränderten Apoptoseanfälligkeit und einer beeinträchtigten Eliminierung geschädigter Zellen in Verbindung gebracht, was CASP2 für mechanistische Studien zu Entscheidungen über das Zellschicksal relevant macht.
caspase-2 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des CASP2-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von CASP2 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die CASP2-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit CASP2-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.