calsequestrin 1 Double Nickase Plasmid (h): sc-403375-NIC
- Zielspezies: human
- 20 µg transfektionsfertige, aufgereinigte Plasmid DNA; geeignet für 20 Transfektionen
- Das calsequestrin 1 Double Nickase Plasmid (h) wird als Plasmid-Paar geliefert. Die einzelnen Plasmide kodieren für eine D10A mutierte Cas9 Nuklease sowie für je eine unterschiedliche, zielspezifische 20nt guide RNA (gRNA) Sequenz. Dies erlaubt eine hohe Knockout-Effizienz bei gleichzeitig größerer Spezifität als das entsprechende CRISPR/Cas9 KO Plasmid
- gRNA Sequenzpaare liegen ca. 20 bp auseinander um ein spezifisches Cas9-vermitteltes "Double Nicking" der genomischen DNA zu erlauben und so im Resultat den Effekt eines Doppelstrangbruchs nachzuahmen.
- Ein Plasmid kodiert für ein Puromycin-Resistenzgen zur Selektion von stabilen Knockout-Zellen. Das andere Plasmid kodiert für ein GFP-Gen für den visuellen Nachweis der Transfektion
- calsequestrin 1 Double-Nickase-Plasmid (h) und calsequestrin 1 Double-Nickase-Plasmid (h2) kodieren unterschiedliche gepaarte gRNA-Designs, die auf CASQ1 abzielen. Möglicherweise ist eines oder sind beide Designs verfügbar
- Nach der Transfektion kann die Effizienz des Gen-Knockouts per Western Blot oder histologisch mit folgendem Antikörper überprüft werden: calsequestrin 1: sc-137080
Bestellinformation
| Produkt | Katalog # | EINHEIT | Preis | ANZAHL | Favoriten | |
calsequestrin 1 Double Nickase Plasmid (h) | sc-403375-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
calsequestrin 1 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-403375-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
CASQ1 kodiert Calsequestrin 1, ein Ca²⁺-bindendes Protein mit hoher Kapazität, das im Lumen des sarkoplasmatischen Retikulums in Skelettmuskelzellen lokalisiert ist. Dort puffert es Ca²⁺ und trägt zur Ausprägung der Erregungs‑Kontraktions‑Kopplung bei. Durch die Modulation der luminalen Ca²⁺-Verfügbarkeit und der Kinetik der Ca²⁺-Freisetzung über den Ryanodinrezeptor (RYR1) leistet Calsequestrin 1 einen Beitrag zur Ca²⁺-Homöostase sowie zu koordinierten Zyklen von Muskelkontraktion und -relaxation. Eine veränderte Funktion oder Expression von CASQ1 kann die intrazelluläre Ca²⁺-Signalübertragung und Stressantworten stören, die mit abnormer Ca²⁺-Freisetzung, eingeschränkter Kontraktilität und einer erhöhten Anfälligkeit für Muskel‑Dysfunktionsphänotypen verknüpft sind. Als zentraler Knotenpunkt der Ca²⁺-Handhabung im sarkoplasmatischen Retikulum ist CASQ1 relevant für mechanistische Untersuchungen Ca²⁺-abhängiger Signalwege, der Proteostase und der metabolischen Umprogrammierung in Muskelfasern.
calsequestrin 1 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des CASQ1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von CASQ1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die CASQ1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit CASQ1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.