Date published: 2026-7-11

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BARD1 Double Nickase Plasmid (h): sc-401212-NIC

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Datenblätter
  • Zielspezies: human
  • 20 µg transfektionsfertige, aufgereinigte Plasmid DNA; geeignet für 20 Transfektionen
  • Das BARD1 Double Nickase Plasmid (h) wird als Plasmid-Paar geliefert. Die einzelnen Plasmide kodieren für eine D10A mutierte Cas9 Nuklease sowie für je eine unterschiedliche, zielspezifische 20nt guide RNA (gRNA) Sequenz. Dies erlaubt eine hohe Knockout-Effizienz bei gleichzeitig größerer Spezifität als das entsprechende CRISPR/Cas9 KO Plasmid
  • gRNA Sequenzpaare liegen ca. 20 bp auseinander um ein spezifisches Cas9-vermitteltes "Double Nicking" der genomischen DNA zu erlauben und so im Resultat den Effekt eines Doppelstrangbruchs nachzuahmen.
  • Ein Plasmid kodiert für ein Puromycin-Resistenzgen zur Selektion von stabilen Knockout-Zellen. Das andere Plasmid kodiert für ein GFP-Gen für den visuellen Nachweis der Transfektion
  • BARD1 Double-Nickase-Plasmid (h) und BARD1 Double-Nickase-Plasmid (h2) kodieren unterschiedliche gepaarte gRNA-Designs, die auf BARD1 abzielen. Möglicherweise ist eines oder sind beide Designs verfügbar
  • Nach der Transfektion kann die Effizienz des Gen-Knockouts per Western Blot oder histologisch mit folgendem Antikörper überprüft werden: BARD1: sc-74559
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    ProduktKatalog #EINHEITPreisANZAHLFavoriten

    BARD1 Double Nickase Plasmid (h)

    sc-401212-NIC
    20 µg
    $410.00

    BARD1 Double Nickase Plasmid (h2)

    sc-401212-NIC-2
    20 µg
    $410.00

    BARD1 (BRCA1-associated RING domain 1) ist ein Tumorsuppressorprotein, das mit BRCA1 einen obligaten Heterodimer bildet und so einen E3-Ubiquitin-Ligase-Komplex erzeugt, der für die Stabilität des Genoms zentral ist. Dieser Komplex koordiniert die Reparatur von DNA-Doppelstrangbrüchen, den Schutz von Replikationsgabeln und die Signalgebung von Zellzyklus-Kontrollpunkten und verknüpft BARD1 damit mit der homologen Rekombination sowie weiteren Signalwegen der DNA-Schadensantwort. Über seine RING- und Ankyrin-Repeat-Domänen trägt BARD1 zur Regulation der Protein-Ubiquitinierung und zur Rekrutierung von Reparaturfaktoren an Schadensstellen bei. Fehlregulationen oder pathogene Varianten in BARD1 wurden mit einer verminderten DNA-Reparaturkapazität und erhöhter genomischer Instabilität in Verbindung gebracht, was seine Bedeutung für Studien zu Mechanismen der Krebsanfälligkeit unterstreicht.

    BARD1 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des BARD1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von BARD1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die BARD1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.

    Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit BARD1-Störung.

    Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.