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ACCβ Double Nickase Plasmid (h) | sc-401903-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
ACCβ Double Nickase Plasmid (h2) | sc-401903-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
ACACB kodiert die Acetyl-CoA-Carboxylase beta (ACCβ), eine biotinabhängige Carboxylase, die an der äußeren Mitochondrienmembran die Bildung von Malonyl-CoA katalysiert. Durch die Kontrolle der Malonyl-CoA-Spiegel reguliert ACCβ die β-Oxidation von Fettsäuren über die Hemmung von CPT1 und verknüpft damit Nährstoffsensorik mit der mitochondrialen Brennstoffauswahl und der zellulären Energiehomöostase. Die Aktivität von ACACB ist in die AMPK-Signalübertragung, insulinresponsive Stoffwechselprogramme und Lipidverarbeitungswege eingebunden, die den oxidativen Stoffwechsel in Muskel und anderen Geweben prägen. Eine dysregulierte ACCβ-Funktion und ein veränderter Malonyl-CoA-Fluss sind mit Stoffwechselphänotypen assoziiert, die für Adipositas, Insulinresistenz und die Biologie der Fettleber relevant sind, und stützen mechanistische Untersuchungen zu lipidgetriebenem zellulärem Stress und Entzündung.
ACCβ Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des ACACB-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von ACACB abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die ACACB-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit ACACB-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.