Date published: 2026-7-10

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Plasmide CRISPR/Cas9 KO Vimentin (canine): sc-437347

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Fiches techniques
  • Espèces cibles: canine
  • 20 µg d'ADN plasmidique purifié et prêt à transfecter; Jusqu'à 20 transfections
  • Vimentin Le plasmide CRISPR/Cas9 Knockout (KO) (canine) est un ensemble de plasmides, chacun codant pour la nucléase Cas9 et un ARN guide (gRNA) de 20 nt spécifique à la cible, conçu pour une efficacité de knockout maximale à l'aide de séquences issues de la bibliothèque GeCKO v2
  • Les séquences d'ARN guide (gRNA) dirigent Cas9 pour induire des cassures double brin (DSB) spécifiques au site dans le locus génomique Vimentin, entraînant un knock-out génique par jonction non homologue (NHEJ)
  • Les gènes de résistance à la puromycine et RFP sont flanqués de sites LoxP, permettant la suppression des marqueurs de sélection via la recombinase Cre (Cre Vector : sc-418923) après l'établissement de lignées cellulaires knock-out stables
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    Plasmide CRISPR/Cas9 KO Vimentin (canine)

    sc-437347
    20 µg
    $397.00

    Présentation

    La vimentine (VIM) est une protéine de filament intermédiaire de type III qui constitue un composant essentiel du réseau cytosquelettique des cellules mésenchymateuses, en soutenant l’architecture cellulaire, la résistance mécanique et le positionnement des organites. Elle contribue au remodelage dynamique lors de la migration cellulaire, de l’adhésion et des réponses associées aux plaies, en se coordonnant avec les systèmes d’actine et de microtubules et en modulant les adhésions focales ainsi que des nœuds de signalisation liés à des programmes de type EMT. La vimentine canine est largement utilisée comme marqueur de l’identité mésenchymateuse et de l’activation stromale, et des modifications de son expression sont associées à des changements d’invasivité, à un remodelage de type fibrotique et à des microenvironnements inflammatoires dans des modèles de pathologie comparée. Ces fonctions font de VIM un point d’entrée utile pour étudier la signalisation du cytosquelette, la mécanotransduction et les changements de phénotype dans les cellules canines.

    Le Vimentin CRISPR/Cas9 KO Plasmid (canine) est un ensemble de plasmides conçus pour la disruption ciblée du gène dans les lignées cellulaires canine. Chaque plasmide du pool co-exprime un sgRNA unique, ciblant un site distinct au sein du locus , ainsi que la nucléase Cas9 de Streptococcus pyogenes, et code pour la GFP afin de permettre l'identification par fluorescence et l'enrichissement des cellules transfectées avec succès. Cette stratégie multi-guide augmente la probabilité d'induire des décalages de cadre ou des délétions produisant un knock-out fonctionnel, offrant ainsi une alternative plus robuste aux approches à guide unique. Les cassures double brin (DSB) induites à plusieurs sites sont résolues par jonction non homologue (NHEJ) ou, lorsqu'elles sont utilisées avec le modèle donneur HDR inclus, par réparation dirigée par homologie (HDR) à un site cible défini au sein du locus.

    Lorsqu'il est utilisé en conjonction avec le donneur HDR exprimant la RFP, les fluorescences GFP et RFP peuvent être utilisées conjointement pour distinguer les populations de cellules transfectées de celles éditées, rationalisant ainsi les workflows de tri par cytométrie en flux et de sélection de clones.

    Donneur de réparation dirigée par homologie (HDR) — Cassette de puromycine avec rapporteur RFP

    Pour les applications nécessitant des clones knock-out confirmés et sélectionnables, le Vimentin plasmide HDR (canine) comprend une construction donneuse HDR contenant une cassette de résistance à la puromycine (PuroR) et un rapporteur protéine fluorescente rouge (RFP), flanquée de bras d'homologie spécifiques à un site cible défini.
    Lorsqu'il est co-transfecté avec le plasmide Vimentin CRISPR/Cas9 KO (canine):

    • La cassette PuroR-RFP s'intègre au site de coupure de Cas9 via HDR, perturbant le cadre de lecture ouvert .
      La fluorescence RFP fournit un indicateur visuel immédiat de la réussite de l'intégration, permettant l'identification ou le tri par fluorescence des cellules éditées avant ou parallèlement à la sélection par la puromycine.
      Les cellules éditées avec succès sont confirmées par leur résistance à la puromycine, ce qui réduit considérablement la charge de criblage des clones.
      Cette stratégie de sélection est idéale pour générer des lignées cellulaires KO clonales stables destinées à des études fonctionnelles en aval, au criblage de médicaments ou au développement de modèles.

    Système de suppression de la cassette Cre-lox

    La construction donneuse HDR comporte des sites loxP flanquant la cassette de sélection PuroR-RFP afin de permettre une suppression propre du marqueur après confirmation du clone. L'expression transitoire de la recombinase Cre via le vecteur Cre inclus Cre Vector: sc-418923 excise la cassette, laissant un site loxP résiduel minimal au sein du locus et éliminant les effets de confusion potentiels sur les tests en aval.
    Cette approche en deux étapes :

    • Minimise la perturbation de l'architecture locale de la chromatine et des éléments régulateurs voisins
      Restaure un contexte génomique quasi-naturel au niveau du locus édité
      Permet la réutilisation de la stratégie de sélection à la puromycine dans la même lignée cellulaire pour des modifications supplémentaires

    Caractéristiques principales

    • gRNA ciblant le ou les exons essentiels à la fonction Vimentin
      Co-expression de SpCas9 et de sgRNA à partir d'un seul plasmide pour une administration simplifiée
      Donneur HDR avec résistance à la puromycine pour une sélection positive des clones
      Cassette PuroR flanquée de loxP avec vecteur de recombinase Cre pour une suppression transparente du marqueur
      Fourni prêt à l'emploi pour une administration par transfection

    Réservé à la recherche. N'est pas destiné à un usage diagnostique ou thérapeutique.