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VHR Double Nickase Plasmid (h) | sc-405733-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
VHR Double Nickase Plasmid (h2) | sc-405733-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Dual-Spezifitätsphosphatase 3 (DUSP3), auch bekannt als Vaccinia-H1-verwandte Phosphatase (VHR), ist eine zytosolische Dual-Spezifitätsphosphatase, die Phosphotyrosin- sowie Phosphoserin/-threonin-Reste an MAPKs dephosphoryliert; eine Aktivität gegenüber Mitgliedern der ERK- und JNK-Familie wurde beschrieben. Durch die Modulation von Stärke und Dauer der MAPK-Signalübertragung trägt VHR zur Kontrolle der Zellzyklusprogression, der Stressantwort-Signalgebung und von Transkriptionsprogrammen downstream von Wachstumsfaktor- und Zytokin-Signalen bei. DUSP3 wurde zudem mit der Regulation von Immunsignalen und zellulärer Proliferation in Verbindung gebracht – über seine Effekte auf den Phosphorylierungszustand von Kinasen und die nachgeschaltete Genexpression. Eine veränderte Expression oder Aktivität von DUSP3/VHR wurde im Kontext onkogener Signalwege sowie in der Biologie hämatologischer und solider Tumoren beschrieben, was mechanistische Studien zur Umverdrahtung von Signalwegen in krankheitsrelevanten Modellen motiviert.
VHR Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des DUSP3-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von DUSP3 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die DUSP3-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit DUSP3-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.