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VEGF-B CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-401522-ACT | 20 µg | $397.00 |
VEGFB kodiert den vaskulären endothelialen Wachstumsfaktor B (VEGF‑B), einen sezernierten Wachstumsfaktor aus der VEGF-Familie, der hauptsächlich über VEGFR1/FLT1 und den Korezeptor Neuropilin‑1 signalisiert. VEGF‑B ist an der Kommunikation zwischen Endothel und Parenchym, der Regulation der vaskulären Homöostase sowie der Lipidaufnahme und dem Lipidstoffwechsel in energieintensiven Geweben beteiligt und verknüpft angiogene mit metabolischen Signalprogrammen. In Zellmodellen kann es Überlebenssignalwege und Stressantworten beeinflussen, und seine Expression wird häufig zusammen mit Netzwerken zur Hypoxie- und Nährstoffsensorik untersucht. Eine dysregulierte VEGFB-Signalgebung wurde in der Literatur mit kardiometabolischen Phänotypen und vaskulärer Pathobiologie in Verbindung gebracht, was seine Nutzung als mechanistischer Knotenpunkt in krankheitsrelevanten Forschungssystemen unterstützt.
VEGF-B Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen VEGFB-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
VEGF-B Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des VEGFB-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der VEGFB-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen VEGF-B-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native VEGFB-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von VEGF-B-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des VEGF-B-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem VEGFB-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.