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TRPC5 CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-403745-ACT | 20 µg | $397.00 |
TRPC5 kodiert einen nichtselektiven, Ca2+-permeablen Kationenkanal aus der Familie der kanonischen Transient-Receptor-Potential-Kanäle (TRPC), der zum rezeptorvermittelten Kalziumeinstrom an der Plasmamembran beiträgt. TRPC5 integriert Signale stromabwärts von G‑Protein‑gekoppelten Rezeptoren und Rezeptor-Tyrosinkinasen über phospholipase‑C‑abhängige Signalwege und prägt dadurch die intrazelluläre Ca2+-Dynamik, die Membranerregbarkeit, Zytoskelett-Remodellierung und transkriptionelle Antworten reguliert. Die Kanalaktivität wurde mit neuronaler und sensorischer Signalübertragung, vaskulärer und renaler Physiologie sowie der Modulation der Zellmigration in Verbindung gebracht. Eine fehlregulierte TRPC5-Signalgebung wird häufig im Kontext von Schmerz- und angstassoziierten Verhaltensweisen, Podocyten-Schädigung und Mechanismen proteinurischer Nierenerkrankungen sowie der Motilität von Krebszellen und Phänotypen der Arzneimittelantwort untersucht.
TRPC5 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen TRPC5-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
TRPC5 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des TRPC5-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der TRPC5-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen TRPC5-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native TRPC5-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von TRPC5-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des TRPC5-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem TRPC5-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.