Date published: 2026-7-10

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TAP2 Double Nickase Plasmid (h): sc-404218-NIC

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Datenblätter
  • Zielspezies: human
  • 20 µg transfektionsfertige, aufgereinigte Plasmid DNA; geeignet für 20 Transfektionen
  • Das TAP2 Double Nickase Plasmid (h) wird als Plasmid-Paar geliefert. Die einzelnen Plasmide kodieren für eine D10A mutierte Cas9 Nuklease sowie für je eine unterschiedliche, zielspezifische 20nt guide RNA (gRNA) Sequenz. Dies erlaubt eine hohe Knockout-Effizienz bei gleichzeitig größerer Spezifität als das entsprechende CRISPR/Cas9 KO Plasmid
  • gRNA Sequenzpaare liegen ca. 20 bp auseinander um ein spezifisches Cas9-vermitteltes "Double Nicking" der genomischen DNA zu erlauben und so im Resultat den Effekt eines Doppelstrangbruchs nachzuahmen.
  • Ein Plasmid kodiert für ein Puromycin-Resistenzgen zur Selektion von stabilen Knockout-Zellen. Das andere Plasmid kodiert für ein GFP-Gen für den visuellen Nachweis der Transfektion
  • TAP2 Double-Nickase-Plasmid (h) und TAP2 Double-Nickase-Plasmid (h2) kodieren unterschiedliche gepaarte gRNA-Designs, die auf TAP2 abzielen. Möglicherweise ist eines oder sind beide Designs verfügbar
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    TAP2 Double Nickase Plasmid (h)

    sc-404218-NIC
    20 µg
    $410.00

    TAP2 Double Nickase Plasmid (h2)

    sc-404218-NIC-2
    20 µg
    $410.00

    TAP2 (Transporter Associated with Antigen Processing 2) kodiert eine Untereinheit eines ABC-Transporters (ATP-binding cassette), die zusammen mit TAP1 ein Heterodimer bildet, um proteasomabgeleitete Peptide aus dem Zytosol in das endoplasmatische Retikulum zu translozieren. Dieser Transportschritt ist entscheidend für die Beladung von MHC‑Klasse‑I‑Molekülen mit Peptiden und die anschließende Antigenpräsentation an CD8+-T‑Zellen und verknüpft TAP2 damit mit dem übergeordneten Weg der Antigenverarbeitung und -präsentation. Eine veränderte TAP2-Funktion kann das Immunopeptidom umgestalten und die Immunüberwachung beeinflussen, indem sie Menge und Repertoire der MHC‑I–Peptidkomplexe auf der Zelloberfläche verändert. Genetische Defekte oder regulatorische Veränderungen in TAP2 wurden mit einer verminderten MHC‑Klasse‑I‑Expression und Phänotypen der Immunflucht in Verbindung gebracht, die für Infektionen, entzündliche Erkrankungen und die Tumorimmunbiologie relevant sind.

    TAP2 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des TAP2-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von TAP2 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die TAP2-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.

    Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit TAP2-Störung.

    Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.