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St3Gal-I Double Nickase Plasmid (m) | sc-422935-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
St3Gal-I Double Nickase Plasmid (m2) | sc-422935-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Das murine Gen **St3gal1** kodiert die im Golgi-Apparat lokalisierte Sialyltransferase **St3Gal-I**, die die Übertragung von Sialinsäure in **α2,3-Bindung** auf **Galβ1-3GalNAc** von Core-1‑O‑Glykanen katalysiert und damit den Sialylierungszustand mucinartiger Glykoproteine prägt. Durch die Modulation terminaler Glykanstrukturen beeinflusst St3Gal-I die Stabilität von Glykoproteinen, Rezeptor‑Ligand‑Interaktionen sowie Zell‑Zell‑ bzw. Zell‑Matrix‑Adhäsionsprozesse, die für Immunregulation und Epithelbiologie zentral sind. Das Enzym ist ein wesentlicher Bestandteil von O‑Glykosylierungswegen, die Membrantransport und Signal-Mikroumgebungen beeinflussen, mit nachgelagerten Auswirkungen auf Entzündung und tumorassoziiertes Glykan-Remodeling. Veränderte **ST3GAL1**-Aktivität und **α2,3‑sialylierte Epitope** werden häufig in Kontexten wie der Entwicklung von Immunzellen, metastaseassoziierter Adhäsion und Mechanismen der glykanvermittelten Immunflucht untersucht.
St3Gal-I Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des St3gal1-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von St3gal1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die St3gal1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit St3gal1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.