Date published: 2026-7-19

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Septin 4 Double Nickase Plasmid (m): sc-422333-NIC

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Datenblätter
  • Zielspezies: mouse
  • 20 µg transfektionsfertige, aufgereinigte Plasmid DNA; geeignet für 20 Transfektionen
  • Das Septin 4 Double Nickase Plasmid (m) wird als Plasmid-Paar geliefert. Die einzelnen Plasmide kodieren für eine D10A mutierte Cas9 Nuklease sowie für je eine unterschiedliche, zielspezifische 20nt guide RNA (gRNA) Sequenz. Dies erlaubt eine hohe Knockout-Effizienz bei gleichzeitig größerer Spezifität als das entsprechende CRISPR/Cas9 KO Plasmid
  • gRNA Sequenzpaare liegen ca. 20 bp auseinander um ein spezifisches Cas9-vermitteltes "Double Nicking" der genomischen DNA zu erlauben und so im Resultat den Effekt eines Doppelstrangbruchs nachzuahmen.
  • Ein Plasmid kodiert für ein Puromycin-Resistenzgen zur Selektion von stabilen Knockout-Zellen. Das andere Plasmid kodiert für ein GFP-Gen für den visuellen Nachweis der Transfektion
  • Septin 4 Double-Nickase-Plasmid (m) und Septin 4 Double-Nickase-Plasmid (m2) kodieren unterschiedliche gepaarte gRNA-Designs, die auf Sept4 abzielen. Möglicherweise ist eines oder sind beide Designs verfügbar
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    Septin 4 Double Nickase Plasmid (m)

    sc-422333-NIC
    20 µg
    $410.00

    Sept4 kodiert Septin 4, ein GTP-bindendes zytoskelettales Gerüstprotein, das sich zu hetero-oligomeren Septinfilamenten und -ringen assembliert, um Membrandomänen sowie Schnittstellen zwischen Aktin und Mikrotubuli zu organisieren. In Mauszellen trägt SEPT4 zur Zytokinese, Zellpolarität, Vesikeltransport und Kompartimentierung am Midbody und anderen Diffusionsbarrieren bei und koordiniert dabei Prozesse wie die Abszission und das kortikale Remodeling. Eine septinabhängige Architektur beeinflusst Signal- und Stressantwortwege, indem sie die räumliche Lokalisation von Proteinkomplexen und die Membrandynamik reguliert. Eine fehlregulierte Septinorganisation wurde in experimentellen Modellen mit Defekten der Zellteilung, der neuronalen und synaptischen Homöostase sowie einer veränderten Anfälligkeit für degenerative und proliferative Phänotypen in Verbindung gebracht.

    Septin 4 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Sept4-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Sept4 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Sept4-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.

    Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Sept4-Störung.

    Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.