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Sall4 Double Nickase Plasmid (h) | sc-401033-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
Sall4 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-401033-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
SALL4 kodiert Sall4, einen C2H2-Zinkfinger-Transkriptionsfaktor, der zur Aufrechterhaltung der Pluripotenz beiträgt und frühe Entwicklungsprogramme der Genexpression reguliert, einschließlich Netzwerken, die Selbsterneuerung, Linienfestlegung und den Chromatinzustand steuern. Sall4 koordiniert Transkriptionsschaltkreise mit Faktoren wie OCT4 und NANOG und interagiert mit epigenetischen Regulatoren, um während der Embryogenese die Aktivität von Enhancern und Promotoren zu formen. In somatischen Kontexten ist eine fehlregulierte SALL4-Expression mit veränderter Differenzierung und proliferativen Signalwegen verknüpft und wurde in mehreren Malignomen beschrieben, was SALL4 zu einem nützlichen Knotenpunkt für die Untersuchung onkogener Transkriptions-Umschaltungen macht. Die genetische Perturbation von SALL4 ermöglicht mechanistische Untersuchungen der Stammzellbiologie, von Zellschicksalsübergängen und von durch Transkriptionsfaktoren getriebenen genregulatorischen Netzwerken.
Sall4 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des SALL4-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von SALL4 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die SALL4-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit SALL4-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.