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RBM7 Double Nickase Plasmid (h) | sc-408808-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
RBM7 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-408808-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
RBM7 kodiert ein RNA-bindendes Protein, das als Kernbestandteil des Nuclear Exosome Targeting (NEXT)-Komplexes fungiert und die Erkennung von RNA mit der Rekrutierung des RNA-Exosoms zur Degradation kurzlebiger und aberranter nukleärer Transkripte koppelt. Durch die Regulation von Produkten pervasiver Transkription, promoteraufwärts gelegenen Transkripten und nichtkodierenden RNAs trägt RBM7 zur RNA-Qualitätskontrolle, zur transkriptionellen Homöostase und zur Genomintegrität bei. Die RBM7-abhängige RNA-Überwachung überschneidet sich mit Prozessen wie der Transkription durch RNA-Polymerase II, der RNA-Prozessierung und zellulären Stressantworten. Eine fehlregulierte RNA-Metabolisierung und beeinträchtigte nukleäre RNA-Abbauwege, an denen RBM7 beteiligt ist, sind für mechanistische Studien zu Krebs und Neurodegeneration relevant, bei denen Instabilität des Transkriptoms ein häufiges Merkmal ist.
RBM7 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des RBM7-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von RBM7 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die RBM7-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit RBM7-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.