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PGCP CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-411466-ACT | 20 µg | $397.00 |
Das humane Gen **CPQ** kodiert die **Plasma-Glutamat-Carboxypeptidase (PGCP)**, eine sezernierte Metalloprotease, die N‑terminale Pyroglutamatreste aus zirkulierenden und extrazellulären Peptiden hydrolysiert und dadurch die Stabilität sowie den Umsatz von Peptiden moduliert. Durch die Verarbeitung bioaktiver Peptidsubstrate kann PGCP proteolytische Netzwerke beeinflussen, die sich mit Nährstoff-Signalwegen, Entzündungsmediatoren und der extrazellulären Peptidhomöostase überschneiden. Eine veränderte Regulation von Enzymen der Peptidverarbeitung wurde mit Änderungen metabolischer und immunbezogener Phänotypen in Verbindung gebracht, sodass CPQ/PGCP einen nützlichen Ansatzpunkt darstellt, um zu untersuchen, wie extrazelluläre Proteolyse zelluläre Antworten prägt. Die CPQ-Expression und die PGCP-Aktivität sind daher für mechanistische Forschung zur Peptidmetabolismus und zur Remodeling auf Signalweg-Ebene in krankheitsassoziierten Kontexten relevant.
PGCP Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen CPQ-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
PGCP Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des CPQ-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der CPQ-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen PGCP-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native CPQ-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von PGCP-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des PGCP-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem CPQ-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.