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LSD1 CRISPR Activation Plasmid (m) | sc-430289-ACT | 20 µg | $397.00 |
Das murine Gen **Kdm1a** kodiert die lysinspezifische Demethylase 1 (LSD1/KDM1A), eine FAD-abhängige Histon-Demethylase, die vor allem H3K4me1/2- und H3K9me1/2-Markierungen entfernt, um die Chromatinzugänglichkeit und transkriptionelle Programme zu modulieren. LSD1 wirkt in multiproteinären Repressor- und Aktivator-Komplexen, darunter CoREST und NuRD, und verknüpft epigenetisches Remodeling mit der RNA-Polymerase-II-abhängigen Genregulation während der Entwicklung, der Linienfestlegung und der Zellzykluskontrolle. Durch die Prägung von Enhancer- und Promotorzuständen beeinflusst Kdm1a Signalwege, die Differenzierung, Stoffwechsel und Stressantworten in mehreren Geweben steuern. Eine fehlregulierte LSD1-Aktivität wird in experimentellen Modellen häufig als mechanistischer Ansatzpunkt genutzt, um abnorme epigenetische Regulation im Zusammenhang mit onkogenen Transkriptionszuständen und neuroentwicklungsbezogenen Phänotypen zu untersuchen.
LSD1 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (m) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen Kdm1a-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
LSD1 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (m) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des Kdm1a-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der Kdm1a-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen LSD1-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native Kdm1a-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von LSD1-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des LSD1-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem Kdm1a-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.