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IGF2BP3 CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-402603-ACT | 20 µg | $397.00 |
IGF2BP3 (Insulin-like Growth Factor 2 mRNA-bindendes Protein 3) ist ein onkofetales RNA-bindendes Protein, das die posttranskriptionelle Genexpression reguliert, indem es die Stabilität, Lokalisation und Translation von mRNA steuert. Durch die Bindung an Zieltranskripte und die Beteiligung an Ribonukleoprotein-Granula beeinflusst IGF2BP3 Programme der Proliferation und Migration, den Fortschritt des Zellzyklus sowie eine stressadaptive Translation, mit Verknüpfungen zu Outputs der IGF-Signalübertragung und breiteren, auf Wachstumsfaktoren ansprechenden Netzwerken. Zudem ist es in die epitranskriptomische Regulation eingebunden, indem es m6A-markierte RNAs erkennt und deren Schicksal kontextabhängig moduliert. Eine aberrante IGF2BP3-Expression ist häufig mit tumorigenen Phänotypen assoziiert und wird in Modellen der Krebsbiologie als Determinante für Invasion, Metastasierung und Mechanismen der Therapieresistenz untersucht.
IGF2BP3 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen IGF2BP3-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
IGF2BP3 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des IGF2BP3-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der IGF2BP3-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen IGF2BP3-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native IGF2BP3-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von IGF2BP3-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des IGF2BP3-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem IGF2BP3-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.