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IFN-α/βRβ Double Nickase Plasmid (h) | sc-403854-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
IFN-α/βRβ Double Nickase Plasmid (h2) | sc-403854-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
IFNAR2 kodiert die Beta-Untereinheit des Interferon-α/β-Rezeptors, eine entscheidende Komponente des Typ-I-Interferonrezeptorkomplexes, die mit IFNAR1 zusammenwirkt, um IFN-α/β zu erkennen und antivirale sowie immunmodulatorische Signalwege zu initiieren. Die Ligandenbindung aktiviert JAK1 und TYK2, was zur Phosphorylierung von STAT1/STAT2 und zur Bildung des ISGF3-Komplexes führt, der die Expression interferon-stimulierter Gene antreibt; dabei bestehen Wechselwirkungen mit den MAPK- und PI3K-Signalwegen. Über diese Kaskaden trägt IFNAR2 dazu bei, die angeborene Immunerkennung, die Antigenpräsentation, die Zellzykluskontrolle und die Apoptose in unterschiedlichen Zelltypen zu regulieren. Eine Fehlregulation der IFNAR2-Signalübertragung wird mit veränderten antiviralen Antworten, chronischer Entzündung und immunvermittelter Pathologie in Verbindung gebracht, weshalb IFNAR2 häufig im Fokus von Studien zur Interferonbiologie und zu Wirt–Pathogen-Interaktionen steht.
IFN-α/βRβ Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des IFNAR2-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von IFNAR2 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die IFNAR2-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit IFNAR2-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.