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GSTO1 Double Nickase Plasmid (h) | sc-404107-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
GSTO1 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-404107-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Glutathion-S-Transferase Omega 1 (GSTO1) ist ein zytosolisches Enzym der Omega-Klasse der GSTs, das Glutathion nutzt, um Thioltransferase- und Deglutathionylierungsreaktionen zu katalysieren, und damit das zelluläre Redoxgleichgewicht sowie den Status der Protein-S-Glutathionylierung beeinflusst. Über diese Aktivitäten trägt GSTO1 zur Entgiftung und zur Regulation von Antworten auf oxidativen Stress bei und greift in den Glutathionstoffwechsel sowie in umfassendere, redoxkontrollierte Signalwege ein. Veränderungen der GSTO1-Expression oder -Aktivität wurden mit einer veränderten Anfälligkeit für oxidative Schäden und inflammatorische Signalgebung in Verbindung gebracht – Prozesse, die für Neurodegeneration, Krebsbiologie und metabolische Stresskontexte relevant sind. In humanen Zellen wird die Funktion von GSTO1 häufig im Zusammenhang mit der Verarbeitung reaktiver Elektrophile, der redoxabhängigen Regulation von Enzymen und stressadaptiven transkriptionellen Programmen untersucht.
GSTO1 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des GSTO1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von GSTO1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die GSTO1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit GSTO1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.